Биология ва тиббиёт муаммолари 2026, №4 (170)

Maqola mavzusi

ЭПИТЕЛИАЛЬНЫЕ РЕЦЕПТОРНЫЕ КЛЕТКИ ОРГАНИЗМА. ВОЛОСКОВЫЕ КЛЕТКИ ОРГАНА СЛУХА (457-465)

Mualliflar

Блинова Софья Анатольевна

Muassasa

Самаркандский государственный медицинский университет, Республика Узбекистан, г. Самарканд

Annotatsiya

В обзоре приведены современные данные о морфо-функциональных свойствах волосковых клеток орга-на Корти. Внутренние волосковые клетки располо-жены в один ряд, они мало меняются по внешнему виду вдоль улитки. Наружные волосковые клетки лежат в три или четыре ряда, они увеличиваются в длину вдоль улитки, их реснички меняют свою фор-му. Внутренние волосковые клетки преимуществен-но обладают афферентной иннервацией и считают-ся основными сенсорными рецепторами, поскольку передают информацию в мозг. Наружные волоско-вые клетки преимущественно обладают эфферент-ными волокнами. Внутренние волосковые клетки осуществляют преобразование и инициируют депо-ляризацию нейронов спирального ганглия. Наружные волосковые клетки являются вспомогательными сенсорными клетками, которые повышают чув-ствительность и избирательность улитки. Нейрон-ные петли обратной связи, передающие эфферент-ные сигналы к наружным волосковым клеткам, спо-собствуют заострению и усилению сигналов. Под-держивающие клетки внутреннего уха играют важ-ную роль в поддержании целостности нейронов спи-рального ганглия и волосковых клеток. Каждая линия поддерживающих клеток во внутреннем ухе млеко-питающих играет свою особую роль в своем кон-кретном анатомическом положении в улитке. Ме-ханочувствительные волосковые клетки теряются с возрастом и очень восприимчивы к повреждениям от шума и ототоксических препаратов.

Kalit so'zlar

орган Корти, внутренние волосковые клетки органа слуха, наружные волосковые клетки органа слуха.

Adabiyotlar

1. Burwood G.W.S., Ren T., Porsov E.V., Nuttall A.L., Fridberger A. Distinctive mechanical response characteristics of the guinea pig apical cochlear or-gan of Corti and basilar membrane // J Gen Physiol. 2026;158(3):e202413611. 2. Ceriani F., Marcotti W. Spontaneous Calcium Signalling in the Developing Mammalian Cochlea // J Assoc Res Otolaryngol. 2026;27:315–330. 3. Driver E.C., Kelley M.W. Development of the cochlea // Development. 2020;147(12):dev162263. 4. Fattayeva D.R., Rizaev J.A., Rakhimova D.A., Kholikov A.A. Clinical picture of sinusitis in pa-tients after COVID-19 with chronic obstructive pulmonary disease // Uzbek Medical Journal. 2021;2(2):53–58. 5. Fattayeva D.R., Rizaev J.A., Rakhimova D.A. Complex approach to treatment methods of chronic maxillary sinusitis after COVID-19 in patients with respiratory pathology // Uzbek Medical Journal. 2021;2(2):59–64. 6. García-Gómez I., Webber J.L., Soria-Izquierdo B., et al. Targeted cell interconversions reveal inner hair cell control of organ of Corti cytoarchitecture // Sci Adv. 2025;11(44):eadz3944. 7. Giese D., Li H., Liu W., Staxäng K., Hodik M., Ladak H.M., et al. Microanatomy of the human tunnel of Corti structures and cochlear partition-tonotopic variations and transcellular signaling // J Anat. 2024;245(2):271–288. 8. He W., Burwood G., Fridberger A., Nuttall A.L., Ren T. An outer hair cell-powered global hydrome-chanical mechanism for cochlear amplification // Hear Res. 2022;423:108407. 9. Hemmert W., Zenner H.P., Gummer A.W. Three-dimensional motion of the organ of Corti // Biophys J. 2000;78(5):2285–2297. 10. Huang S., Zhu J., Zhang J., Gong T., Fei Z., Chen P., et al. Connexins in Acquired Hearing Loss: Expanding Research Perspectives // Biomedicines. 2025;13(12):3109. 11. Inoyatova F.I., Rizaev J.A., Primako V.I., Nadjimutdinova N.Sh., Usmanova S.B., Karimov J.J. Organization of a set of measures to provide as-sistance to children with hearing impairments and evaluation of their effectiveness // Eurasian Journal of Otorhinolaryngology – Head and Neck Surgery. 2024;3(2):85–92. 12. Jang M.W., Lim J., Park M.G., Lee J.H., Lee C.J. Active role of glia-like supporting cells in the organ of Corti: Membrane proteins and their roles in hear-ing // Glia. 2022;70(10):1799–1825. 13. Kelley M.W. Cellular commitment and differen-tiation in the organ of Corti // Int J Dev Biol. 2007;51(6–7):571–583. 14. Khasanov I.I., Rizaev J.A., Shomurodov K.E. Specific features of dental implantation in patients with maxillar sinusitis // EPRA International Journal of Socio-Economic and Environmental Outlook. 2020;7(5):9–17. 15. Langlie J., Finberg A., Bencie N.B., et al. Recent advancements in cell-based models for auditory dis-orders // Bioimpacts. 2022;12(2):155–169. 16. Levic S., Lukashkina V.A., Simões P., Lukashkin A.N., Russell I.J. A Gap-Junction Mutation Reveals That Outer Hair Cell Extracellular Receptor Poten-tials Drive High-Frequency Cochlear Amplification // J Neurosci. 2022;42(42):7875–7884. 17. Lindner L.A., Derstroff D., Oliver D., Reimann K. Distribution of ciliary adaptor proteins tubby and TULP3 in the organ of Corti // Front Neurosci. 2023;17:1162937. 18. Lukashkin A.N., Russell I.J., Rybdylova O. Local cochlear mechanical responses revealed through out-er hair cell receptor potential measurements // Bio-phys J. 2024;123(18):3163–3175. 19. Lukashkina V.A., Levic S., Simões P., Xu Z., Li Y., Haugen T., et al. Optogenetics Reveals Roles for Supporting Cells in Force Transmission to and From Outer Hair Cells in the Mouse Cochlea // J Neurosci. 2024;44(4):e1179232023. 20. Maier E.C., Saxena A., Alsina B., Bronner M.E., Whitfield T.T. Sensational placodes: neurogenesis in the otic and olfactory systems // Dev Biol. 2014;389(1):50–67. 21. Marcotti W. Functional assembly of mammalian cochlear hair cells // Exp Physiol. 2012;97(4):438–451. 22. McPherson D.R. Sensory Hair Cells: An Intro-duction to Structure and Physiology // Integr Comp Biol. 2018;58(2):282–300. 23. Meenderink S.W.F., Shera C.A., Valero M.D., Liberman M.C., Abdala C. Morphological Immaturi-ty of the Neonatal Organ of Corti and Associated Structures in Humans // J Assoc Res Otolaryngol. 2019;20(5):461–474. 24. Morrill S., He D.Z.Z. Apoptosis in inner ear sen-sory hair cells // J Otol. 2017;12(4):151–164. 25. Mu Y., Su H., Wu F., Yang J., Li D. Research Progress of Hair Cell Protection Mechanism // Neu-ral Plast. 2020;2020:8850447. 26. Nankali A., Wang Y., Strimbu C.E., Olson E.S., Grosh K. A role for tectorial membrane mechanics in activating the cochlear amplifier // Sci Rep. 2020;10(1):17620. 27. Nayak G.D., Ratnayaka H.S., Goodyear R.J., Richardson G.P. Development of the hair bundle and mechanotransduction // Int J Dev Biol. 2007;51(6–7):597–608. 28. O'Sullivan J.D.B., Bullen A., Mann Z.F. Mito-chondrial form and function in hair cells // Hear Res. 2023;428:108660. 29. Raphael Y., Altschuler R.A. Structure and inner-vation of the cochlea // Brain Res Bull. 2003;60(5–6):397–422. 30. Rizaev J.A., Agzamova S.S. Состояние гемоди-намики глаза пациентов с сочетанной травмой костных структур орбиты и глазного яблока и эф-фективность лечения // Проблемы биологии и ме-дицины. 2020;2(118):102–105. 31. Rizaev J.A., Agzamova S.S., Tulyaganov N.A. Результаты ретроспективного анализа сочетанных травм средней зоны лица // Журнал стоматологии и краниофациальных исследований. 2023;4(2):6–12. 32. Rizaev J.A., Agzamova S.S., Yuldashov S.A. Im-provement of Surgical Treatment with Combined Sculoorbital Injuries // Global Journal of Medical Research J: Dentistry & Otolaryngology. 2020;20(1):13–16. 33. Rizaev J.A., Maeda H., Khramova N.V. Plastic surgery for the defects in maxillofacial region after surgical resection of benign tumors // Annals of Cancer Research and Therapy. 2019;27(1):22–23. 34. Rizaev J.A., Shomurodov K.E., Agzamova S.S. Медицинская реабилитация больных с перелома-ми скуло-орбитального комплекса // Журнал сто-матологии и краниофациальных исследований. 2020;1(2):8–11. 35. Rizaev J.A., Tulyaganov N.A. Состояние верх-нечелюстной пазухи у пациентов с переломами скулоорбитального комплекса: обзор литературы // Advanced Ophthalmology. 2023;2(2):66–73. 36. Tani T., Koike-Tani M., Tran M.T., Shribak M., Levic S. Postnatal structural development of mam-malian Basilar Membrane provides anatomical basis for the maturation of tonotopic maps and frequency tuning // Sci Rep. 2021;11(1):7581. 37. Vélez-Ortega A.C., Frolenkov G.I. Building and repairing the stereocilia cytoskeleton in mammalian auditory hair cells // Hear Res. 2019;376:47–57. 38. Yizhar-Barnea O., Avraham K.B. Single cell analysis of the inner ear sensory organs // Int J Dev Biol. 2017;61(3–5):205–213. 39. Zhang L.W., Cang X.H., Chen Y., Guan M.X. In vitro culture of mammalian inner ear hair cells // J Zhejiang Univ Sci B. 2019;20(2):170–179. 40. Zhang S., Qiang R., Dong Y., Zhang Y., Chen Y., Zhou H., Gao X., Chai R. Hair cell regeneration from inner ear progenitors in the mammalian coch-lea // Am J Stem Cells. 2020;9(3):25–35.