Биология ва тиббиёт муаммолари 2026, №4 (170)

Maqola mavzusi

МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ДИНАМИКА И ИММУНОМОДУЛИРУЮЩАЯ КОРРЕКЦИЯ РЕАК-ТИВНОЙ ПЕРЕСТРОЙКИ СЕЛЕЗЁНКИ ПРИ ХРОНИЧЕСКОМ МИКОБАКТЕРИАЛЬНОМ ВОЗДЕЙСТВИИ (418-423)

Mualliflar

Тоиров Ойбек Алиевич, Тешаев Шухрат Жумаевич

Muassasa

Бухарский государственный медицинский институт, Республика Узбекистан, г. Бухара

Annotatsiya

Актуальность. Реактивная перестройка селезёнки при хроническом микобактериальном воздействии при длительном сохранении может сменяться ис-тощением лимфоидной ткани, однако возможность её иммуномодулирующей коррекции изучена недо-статочно. Цель исследования - изучить морфологи-ческую динамику реактивной перестройки селезёнки белых беспородных крыс и оценить возможность её иммуномодулирующей коррекции в условиях экспе-риментального хронического микобактериального воздействия. Материал и методы. Исследование проведено на 30 белых беспородных крысах (кон-троль, опыт, коррекция); хроническое воздействие моделировали однократным подкожным введением неполного адъюванта Фрейнда с инактивированны-ми микобактериями Mycobacterium tuberculosis H37Ra (0,2 мл), в группе коррекции дополнительно вводили иммуномодулятор. Применяли окраску ге-матоксилином-эозином и по Ван-Гизону, морфо-метрию, полуколичественную оценку и вариацион-ную статистику. Результаты. В опытной группе установлены увеличение площади белой пульпы, доли активных герминативных центров, индексов ПАЛМ и краевой зоны, а также макрофагальная реакция красной пульпы; в группе коррекции все показатели демонстрировали частичную нормализацию в сто-рону контрольных значений. Выводы. Иммуномоду-лирующая коррекция обеспечивает частичную мор-фологическую нормализацию селезёнки, а выделен-ные количественные критерии позволяют объектив-но оценивать её эффективность.

Kalit so'zlar

селезёнка, белая пульпа, красная пульпа, герминативный центр, периартериальные лимфоидные муфты, макрофагальная реакция, иммуномодулятор, коррекция, микобактерии, морфология.

Adabiyotlar

1. Ayodele S., Kumar P., van Eyk A., Choonara Y.E. Advances in immunomodulatory strategies for host-directed therapies in combating tuberculosis. Biomed Pharmacother. 2023;162:114588. doi:10.1016/j.biopha.2023.114588. 2. Billiau A., Matthys P. Modes of action of Freund's adjuvants in experimental models of auto-immune diseases. J Leukoc Biol. 2001;70(6):849–860. doi:10.1189/jlb.70.6.849. 3. Bronte V., Pittet M.J. The spleen in local and systemic regulation of immunity. Immunity. 2013;39(5):806–818. doi:10.1016/j.immuni.2013.10.010. 4. Cesta M.F. Normal structure, function, and his-tology of the spleen. Toxicol Pathol. 2006;34(5):455–465. doi:10.1080/01926230600867743. 5. den Haan J.M.M., Kraal G. Innate immune func-tions of macrophage subpopulations in the spleen. J Innate Immun. 2012;4(5–6):437–445. doi:10.1159/000335216. 6. Dzhalilova D.Sh., Kosyreva A.M., Diatroptov M.E., Zolotova N.A., Tsvetkov I.S., Mkhitarov V.A., Makarova O.V., Khochanskiy D.N. Morphological characteristics of the thymus and spleen and the subpopulation composition of lymphocytes in pe-ripheral blood during systemic inflammatory re-sponse in male rats with different resistance to hy-poxia. Int J Inflam. 2019;2019:7584685. doi:10.1155/2019/7584685. 7. Ganchua S.K.C., White A.G., Klein E.C., Flynn J.L. Lymph nodes—the neglected battlefield in tu-berculosis. PLoS Pathog. 2020;16(8):e1008632. doi:10.1371/journal.ppat.1008632. 8. Harbuz M.S., Rees R.G., Eckland D., Jessop D.S., Brewerton D., Lightman S.L. Paradoxical responses of hypothalamic corticotropin-releasing factor (CRF) messenger ribonucleic acid (mRNA) and CRF-41 peptide and adenohypophysial proopiomelanocortin mRNA during chronic inflammatory stress. Endo-crinology. 1992;130(3):1394–1400. doi:10.1210/endo.130.3.1537299. 9. Lewis S.M., Williams A., Eisenbarth S.C. Struc-ture and function of the immune system in the spleen. Sci Immunol. 2019;4(33):eaau6085. doi:10.1126/sciimmunol.aau6085. 10. Mebius R.E., Kraal G. Structure and function of the spleen. Nat Rev Immunol. 2005;5(8):606–616. doi:10.1038/nri1669. 11. Pagán A.J., Ramakrishnan L. The formation and function of granulomas. Annu Rev Immunol. 2018;36:639–665. doi:10.1146/annurev-immunol-032712-100022. 12. Ramakrishnan L. Revisiting the role of the gran-uloma in tuberculosis. Nat Rev Immunol. 2012;12(5):352–366. doi:10.1038/nri3211. 13. Silverman M.N., Sternberg E.M. Glucocorticoid regulation of inflammation and its functional corre-lates: from HPA axis to glucocorticoid receptor dys-function. Ann N Y Acad Sci. 2012;1261:55–63. doi:10.1111/j.1749-6632.2012.06633.x. 14. Swanson R.V., Gupta A., Foreman T.W., et al. Antigen-specific B cells direct T follicular-like helper cells into lymphoid follicles to mediate Mycobacte-rium tuberculosis control. Nat Immunol. 2023;24(5):855–868. doi:10.1038/s41590-023-01476-3. 15. Victora G.D., Nussenzweig M.C. Germinal cen-ters. Annu Rev Immunol. 2022;40:413–442. doi:10.1146/annurev-immunol-120419-022408. 16. Wallis R.S., Hafner R. Advancing host-directed therapy for tuberculosis. Nat Rev Immunol. 2015;15(4):255–263. doi:10.1038/nri3813. 17. Zumla A., Rao M., Dodoo E., Maeurer M. Poten-tial of immunomodulatory agents as adjunct host-directed therapies for multidrug-resistant tuberculo-sis. BMC Med. 2016;14:89. doi:10.1186/s12916-016-0635-1.